GB 4789.4-2010 食品安全国家标准 食品微生物学检验 沙门氏菌检验

GB 4789.4-2010 National food safety standard Food microbiological examination:Salmonella

国家标准 中文简体 被代替 已被新标准代替,建议下载标准 GB 4789.4-2024 | 页数:20页 | 格式:PDF

基本信息

标准号
GB 4789.4-2010
相关服务
标准类型
国家标准
标准状态
被代替
中国标准分类号(CCS)
国际标准分类号(ICS)
-
发布日期
2010-03-26
实施日期
2010-06-01
发布单位/组织
中华人民共和国卫生部
归口单位
-
适用范围
本标准规定了食品中沙门氏菌(Salmonella)的检验方法。
本标准适用于食品中沙门氏菌的检验。

研制信息

起草单位:
-
起草人:
-
出版信息:
页数:20页 | 字数:37 千字 | 开本: 大16开

内容描述

中华人民共和国国家标准

GB4789.4—2010

食品安全国家标准

食品微生物学检验沙门氏菌检验

Nationalfoodsafetystandard

Foodmicrobiologicalexamination:Salmonella

2010-03-26发布2010-06-01实施

中华人民共和国卫生部发布

GB4789.4—2010

前言

本标准代替GB/T4789.4-2008《食品卫生微生物学检验沙门氏菌检验》。

本标准与GB/T4789.4-2008相比,主要变化如下:

——修改了标准的中英文名称;

——修改了标准的范围;

——修改了培养基和试剂;

——修改了设备和材料;

——修改了附录A。

本标准的附录A、附录B为规范性附录。

本标准所代替的历次版本发布情况为:

——GB4789.4-84、GB4789.4-1994、GB/T4789.4-2003、GB/T4789.4-2008。

I

GB4789.4—2010

食品安全国家标准

食品微生物学检验沙门氏菌检验

1范围

本标准规定了食品中沙门氏菌(Salmonella)的检验方法。

本标准适用于食品中沙门氏菌的检验。

2设备和材料

除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:

2.1冰箱:2℃~5℃。

2.2恒温培养箱:36℃±1℃,42℃±1℃。

2.3均质器。

2.4振荡器。

2.5电子天平:感量0.1g。

2.6无菌锥形瓶:容量500mL,250mL。

2.7无菌吸管:1mL(具0.01mL刻度)、10mL(具0.1mL刻度)或微量移液器及吸头。

2.8无菌培养皿:直径90mm。

2.9无菌试管:3mm×50mm、10mm×75mm。

2.10无菌毛细管。

2.11pH计或pH比色管或精密pH试纸。

2.12全自动微生物生化鉴定系统。

3培养基和试剂

3.1缓冲蛋白胨水(BPW):见附录A中A.1。

3.2四硫磺酸钠煌绿(TTB)增菌液:见附录A中A.2。

3.3亚硒酸盐胱氨酸(SC)增菌液:见附录A中A.3。

3.4亚硫酸铋(BS)琼脂:见附录A中A.4。

3.5HE琼脂:见附录A中A.5。

3.6木糖赖氨酸脱氧胆盐(XLD)琼脂:见附录A中A.6。

1

GB4789.4—2010

3.7沙门氏菌属显色培养基。

3.8三糖铁(TSI)琼脂:见附录A中A.7。

3.9蛋白胨水、靛基质试剂:见附录A中A.8。

3.10尿素琼脂(pH7.2):见附录A中A.9。

3.11氰化钾(KCN)培养基:见附录A中A.10。

3.12赖氨酸脱羧酶试验培养基:见附录A中A.11。

3.13糖发酵管:见附录A中A.12。

3.14邻硝基酚β-D半乳糖苷(ONPG)培养基:见附录A中A.13。

3.15半固体琼脂:见附录A中A.14。

3.16丙二酸钠培养基:见附录A中A.15。

3.17沙门氏菌O和H诊断血清。

3.18生化鉴定试剂盒。

2

GB4789.4—2010

4检验程序

沙门氏菌检验程序见图1。

检样

25g(mL)样品+225mLBPW

36℃±1℃,8h~18h

1mL+TTB10mL1mL+SC10mL

42℃±1℃,18h~24h36℃±1℃,18h~24h

BSXLD(或HE、显色培养基)

36℃±1℃,40h~48h36℃±1℃,18h~24h

挑取可疑菌落

TSI,赖氨酸,NA,靛基质,尿素(pH7.2),KCN

HS+靛基质-HS-靛基质-尿

生化鉴定试剂盒或全2HS+靛基质+2反应结果与左

2

尿素-KCN-素-KCN-侧描述不符

自动微生物生化鉴定尿素-KCN-

赖氨酸+赖氨酸+/-

系统+赖氨酸+

甘露醇+、山梨醇+ONPG-

沙门氏菌,血清学试验非沙门氏菌

报告

图1沙门氏菌检验程序

5操作步骤

5.1前增菌

称取25g(mL)样品放入盛有225mLBPW的无菌均质杯中,以8000r/min~10000r/min均质

1min~2min,或置于盛有225mLBPW的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打1min~2min。若样

品为液态,不需要均质,振荡混匀。如需测定pH值,用1mol/mL无菌NaOH或HCl调pH至6.8±0.2。

3

GB4789.4—2010

无菌操作将样品转至500mL锥形瓶中,如使用均质袋,可直接进行培养,于36℃±1℃培养8h~

18h。

如为冷冻产品,应在45℃以下不超过15min,或2℃~5℃不超过18h解冻。

5.2增菌

轻轻摇动培养过的样品混合物,移取1mL,转种于10mLTTB内,于42℃±1℃培养18h~24

h。同时,另取1mL,转种于10mLSC内,于36℃±1℃培养18h~24h。

5.3分离

分别用接种环取增菌液1环,划线接种于一个BS琼脂平板和一个XLD琼脂平板(或HE琼脂

平板或沙门氏菌属显色培养基平板)。于36℃±1℃分别培养18h~24h(XLD琼脂平板、HE琼脂

平板、沙门氏菌属显色培养基平板)或40h~48h(BS琼脂平板),观察各个平板上生长的菌落,

各个平板上的菌落特征见表1。

表1沙门氏菌属在不同选择性琼脂平板上的菌落特征

选择性琼脂平板沙门氏菌

BS琼脂菌落为黑色有金属光泽、棕褐色或灰色,菌落周围培养基可呈黑色或棕色;有些

菌株形成灰绿色的菌落,周围培养基不变。

HE琼脂蓝绿色或蓝色,多数菌落中心黑色或几乎全黑色;有些菌株为黄色,中心黑色或

几乎全黑色。

XLD琼脂菌落呈粉红色,带或不带黑色中心,有些菌株可呈现大的带光泽的黑色中心,或

呈现全部黑色的菌落;有些菌株为黄色菌落,带或不带黑色中心。

沙门氏菌属显色培养基按照显色培养基的说明进行判定。

5.4生化试验

5.4.1自选择性琼脂平板上分别挑取2个以上典型或可疑菌落,接种三糖铁琼脂,先在斜面划线,

再于底层穿刺;接种针不要灭菌,直接接种赖氨酸脱羧酶试验培养基和营养琼脂平板,于36℃±1℃

培养18h~24h,必要时可延长至48h。在三糖铁琼脂和赖氨酸脱羧酶试验培养基内,沙门氏菌属

的反应结果见表2。

表2沙门氏菌属在三糖铁琼脂和赖氨酸脱羧酶试验培养基内的反应结果

三糖铁琼脂初步判断

赖氨酸脱羧酶试验培养基

斜面底层产气硫化氢

KA+(-)+(-)+可疑沙门氏菌属

KA+(-)+(-)-可疑沙门氏菌属

AA+(-)+(-)+可疑沙门氏菌属

AA+/-+/--非沙门氏菌

KK+/-+/-+/-非沙门氏菌

注:K:产碱,A:产酸;+:阳性,-:阴性;+(-):多数阳性,少数阴性;+/-:阳性或阴性。

5.4.2接种三糖铁琼脂和赖氨酸脱羧酶试验培养基的同时,可直接接种蛋白胨水(供做靛基质试

验)、尿素琼脂(pH7.2)、氰化钾(KCN)培养基,也可在初步判断结果后从营养琼脂平板上挑

取可疑菌落接种。于36℃±1℃培养18h~24h,必要时可延长至48h,按表3判定结果。将已挑菌

落的平板储存于2℃~5℃或室温至少保留24h,以备必要时复查。

4

GB4789.4—2010

表3沙门氏菌属生化反应初步鉴别表

反应序号硫化氢靛基质pH7.2尿素氰化钾赖氨酸脱羧酶

(H2S)(KCN)

A1+---+

A2++--+

A3----+/-

注:+阳性;-阴性;+/-阳性或阴性。

5.4.2.1反应序号A1:典型反应判定为沙门氏菌属。如尿素、KCN和赖氨酸脱羧酶3项中有1

项异常,按表4可判定为沙门氏菌。如有2项异常为非沙门氏菌。

表4沙门氏菌属生化反应初步鉴别表

pH7.2尿素氰化钾(KCN)赖氨酸判定结果

脱羧酶

---甲型副伤寒沙门氏菌(要求血清学鉴定结果)

-++沙门氏菌Ⅳ或Ⅴ(要求符合本群生化特性)

+-+沙门氏菌个别变体(要求血清学鉴定结果)

注:+表示阳性;+表示阴性。

5.4.2.2反应序号A2:补做甘露醇和山梨醇试验,沙门氏菌靛基质阳性变体两项试验结果均为阳

性,但需要结合血清学鉴定结果进行判定。

5.4.2.3反应序号A3:补做ONPG。ONPG阴性为沙门氏菌,同时赖氨酸脱羧酶阳性,甲型副伤寒

沙门氏菌为赖氨酸脱羧酶阴性。

5.4.2.4必要时按表5进行沙门氏菌生化群的鉴别。

表5沙门氏菌属各生化群的鉴别

项目ⅠⅡⅢⅣⅤⅥ

卫矛醇++--+-

山梨醇+++++-

水杨苷---+--

ONPG--+-+-

丙二酸盐-++---

KCN---++-

注:+表示阳性;-表示阴性。

5.4.3如选择生化鉴定试剂盒或全自动微生物生化鉴定系统,可根据5.4.1的初步判断结果,从营

养琼脂平板上挑取可疑菌落,用生理盐水制备成浊度适当的菌悬液,使用生化鉴定试剂盒或全自动

微生物生化鉴定系统进行鉴定。

5.5血清学鉴定

5.5.1抗原的准备

一般采用1.2%~1.5%琼脂培养物作为玻片凝集试验用的抗原。

O血清不凝集时,将菌株接种在琼脂量较高的(如2%~3%)培养基上再检查;如果是由于

Vi抗原的存在而阻止了O凝集反应时,可挑取菌苔于1mL生理盐水中做成浓菌液,于酒精灯火焰

5

GB4789.4—2010

上煮沸后再检查。H抗原发育不良时,将菌株接种在0.55%~0.65%半固体琼脂平板的中央,俟菌落

蔓延生长时,在其边缘部分取菌检查;或将菌株通过装有0.3%~0.4%半固体琼脂的小玻管1次~2

次,自远端取菌培养后再检查。

5.5.2多价菌体抗原(O)鉴定

在玻片上划出2个约1cm×2cm的区域,挑取1环待测菌,各放1/2环于玻片上的每一区域上

部,在其中一个区域下部加1滴多价菌体(O)抗血清,在另一区域下部加入1滴生理盐水,作为对

照。再用无菌的接种环或针分别将两个区域内的菌落研成乳状液。将玻片倾斜摇动混合1min,并对

着黑暗背景进行观察,任何程度的凝集现象皆为阳性反应。

5.5.3多价鞭毛抗原(H)鉴定

同5.5.2。

5.5.4血清学分型(选做项目)

5.5.4.1O抗原的鉴定

用A~F多价O血清做玻片凝集试验,同时用生理盐水做对照。在生理盐水中自凝者为粗糙形

菌株,不能分型。

被A~F多价O血清凝集者,依次用O4;O3、O10;O7;O8;O9;O2和O11因子血清做凝集

试验。根据试验结果,判定O群。被O3、O10血清凝集的菌株,再用O10、O15、O34、O19单因

子血清做凝集试验,判定E1、E2、E3、E4各亚群,每一个O抗原成分的最后确定均应根据O单因

子血清的检查结果,没有O单因子血清的要用两个O复合因子血清进行核对。

不被A~F多价O血清凝集者,先用9种多价O血清检查,如有其中一种血清凝集,则用这种

血清所包括的O群血清逐一检查,以确定O群。每种多价O血清所包括的O因子如下:

O多价1A,B,C,D,E,F,群(并包括6,14群)

O多价213,16,17,18,21群

O多价328,30,35,38,39群

O多价440,41,42,43群

O多价544,45,47,48群

O多价650,51,52,53群

O多价755,56,57,58群

O多价859,60,61,62群

O多价963,65,66,67群

5.5.4.2H抗原的鉴定

属于A~F各O群的常见菌型,依次用表6所述H因子血清检查第1相和第2相的H抗原。

表6A~F群常见菌型H抗原表

O群第1相第2相

Aa无

Bg,f,s无

Bi,b,d2

C1k,v,r,c5,z15

C2b,d,r2,5

D(不产气的)d无

D(产气的)g,m,p,q无

E1h,v6,w,x

E4g,s,t无

E4i

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不常见的菌型,先用8种多价H血清检查,如有其中一种或两种血清凝集,则再用这一种或两种

血清所包括的各种H因子血清逐一检查,以第1相和第2项的H抗原。8种多价H血清所包括的H

因子如下:

H多价1a,b,c,d,i

H多价2eh,enx,enz15,fg,gms,gpu,gp,gq,mt,gz51

H多价3k,r,y,z,z10,lv,lw,lz13,lz28,lz40

H多价41,2;1,5;1,6;1,7;z6

H多价5zz,zz,zz,z,z,z,z

42342443229353638

H多价6z39,z41,z42,z44

H多价7z52,z53,z54,z55

H多价8z56,z57,z60,z61,z62

每一个H抗原成分的最后确定均应根据H单因子血清的检查结果,没有H单因子血清的要用两

个H复合因子血清进行核对。

检出第1相H抗原而未检出第2相H抗原的或检出第2相H抗原而未检出第1相H抗原的,可

在琼脂斜面上移种1~2代后再检查。如仍只检出一个相的H抗原,要用位相变异的方法检查其另一

个相。单相菌不必做位相变异检查。

位相变异试验方法如下:

小玻管法:将半固体管(每管约1mL~2mL)在酒精灯上溶化并冷至50℃,取已知相的H

因子血清0.05mL~0.1mL,加入于溶化的半固体内,混匀后,用毛细吸管吸取分装于供位相变异试

验的小玻管内,俟凝固后,用接种针挑取待检菌,接种于一端。将小玻管平放在平皿内,并在其旁

放一团湿棉花,以防琼脂中水分蒸发而干缩,每天检查结果,待另一相细菌解离后,可以从另一端

挑取细菌进行检查。培养基内血清的浓度应有适当的比例,过高时细菌不能生长,过低时同一相细

菌的动力不能抑制。一般按原血清1:200~1:800的量加入。

小倒管法:将两端开口的小玻管(下端开口要留一个缺口,不要平齐)放在半固体管内,小玻

管的上端应高出于培养基的表面,灭菌后备用。临用时在酒精灯上加热溶化,冷至50℃,挑取因子

血清1环,加入小套管中的半固体内,略加搅动,使其混匀,俟凝固后,将待检菌株接种于小套管

中的半固体表层内,每天检查结果,待另一相细菌解离后,可从套管外的半固体表面取菌检查,或

转种1%软琼脂斜面,于37℃培养后再做凝集试验。

简易平板法:将0.35%~0.4%半固体琼脂平板烘干表面水分,挑取因子血清1环,滴在半固体

平板表面,放置片刻,待血清吸收到琼脂内,在血清部位的中央点种待检菌株,培养后,在形成蔓

延生长的菌苔边缘取菌检查。

5.5.4.3Vi抗原的鉴定

用Vi因子血清检查。已知具有Vi抗原的菌型有:伤寒沙门氏菌,丙型副伤寒沙门氏菌,都柏林

沙门氏菌。

5.5.4.4菌型的判定

根据血清学分型鉴定的结果,按照附录B或有关沙门氏菌属抗原表判定菌型。

6结果与报告

综合以上生化试验和血清学鉴定的结果,报告25g(mL)样品中检出或未检出沙门氏菌。

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GB4789.4—2010

附录A

(规范性附录)

培养基和试剂

A.1缓冲蛋白胨水(BPW)

A.1.1成分

蛋白胨10.0g

氯化钠5.0g

磷酸氢二钠(含12个结晶水)9.0g

磷酸二氢钾1.5g

蒸馏水1000mL

pH

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