DB12/T 838-2018 辣椒种子纯度SSR分子标记鉴定方法

DB12/T 838-2018

天津市地方标准 简体中文 现行 页数:9页 | 格式:PDF

基本信息

标准号
DB12/T 838-2018
标准类型
天津市地方标准
标准状态
现行
中国标准分类号(CCS)
国际标准分类号(ICS)
发布日期
2018-11-07
实施日期
2018-12-01
发布单位/组织
天津市质量技术监督局
归口单位
天津市农村工作委员会
适用范围
本标准适用于辣椒单交种的纯度鉴定。

发布历史

文前页预览

研制信息

起草单位:
天津市农业质量标准与检测技术研究所、天津市蔬菜研究中心、黑龙江省农业科学院农产品质量安全研究所
起草人:
兰青阔、吕敬刚、赵新、王成、兰璞、焦荻、高素燕、陈锐、关海涛、张耀中、焦贺敏
出版信息:
页数:9页 | 字数:- | 开本: -

内容描述

ICS65.020.20

B04

DB12

天津市地方标准

DB12/T838—2018

辣椒种子纯度SSR分子标记鉴定方法

MethodofidentifyingseedpurityofpepperbyusingSSR-basedmarker

2018-11-07发布2018-12-01实施

天津市市场和质量监督管理委员会发布

DB12/T838—2018

前言

本标准按照GB/T1.1—2009给出的规则起草。

本标准由天津市农村工作委员会提出并归口。

本标准起草单位:天津市农业质量标准与检测技术研究所、天津市蔬菜研究中心、黑龙江省农业科

学院农产品质量安全研究所。

本标准主要起草人:兰青阔、吕敬刚、赵新、王成、兰璞、焦荻、高素燕、陈锐、关海涛、张耀中、

焦贺敏。

I

DB12/T838—2018

辣椒种子纯度SSR分子标记鉴定方法

1范围

本标准规定了辣椒种子纯度SSR分子标记鉴定方法的原理、仪器设备及试剂、方法步骤、纯度计算。

本标准适用于辣椒单交种的纯度鉴定。

2规范性引用文件

下列文件对于本标准的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本标

准。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本标准。

GB/T3543.2农作物种子检验规程扦样

GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法

3术语和定义

下列术语和定义适用于本文件。

3.1

种子纯度seedpurity

种子在SSR分子标记带型方面典型一致的程度,用具有本品种特异带型的种子粒数占鉴定样品种子

粒数的百分率表示,以反映某品种特征特性的一致性程度。

3.2

聚合酶链式反应polymerasechainreaction(PCR)

一种在体外通过酶促反应扩增特异DNA片段的技术。

3.3

简单重复序列simplesequencerepeat(SSR)

由几个核苷酸(1~6个)为重复单位聚集而成的长达几十个至几百个bp(一般为100~200)的串联

重复序列,又称微卫星序列或短串联重复序列,其高度多态性主要来源于串联数目的不同。

3.4

分子标记molecularmarker

以蛋白质、核酸分子的多态性为基础,鉴定生物在遗传上的差异。

4原理

SSR分布于辣椒整个基因组,每个位点上重复单位的数目不同造成了品种间的多态性,利用PCR技术

将多态的SSR扩增出来,通过电泳检测扩增产物,利用电泳图谱进行辣椒种子纯度鉴定。

5仪器设备及试剂

1

DB12/T838—2018

5.1仪器设备

PCR仪;测序电泳槽;水平电泳槽;高压电泳仪(3000V,400mA,400W);万分之一电子天平;

微量加样器;磁力搅拌器;台式离心机;紫外-可见成像系统;胶片观察灯;水平摇床;高压灭菌锅;

pH计等。

5.2试剂

乙二胺四乙酸二钠(EDTA-Na2);三羟甲基氨基甲烷(Tris);盐酸(HCl,36%);十二烷基硫酸

钠(SDS);氯化钠(NaCl);氢氧化钠(NaOH);硼酸;去离子甲酰胺;溴酚蓝;二甲苯青FF;甲叉

双丙烯酰胺;丙烯酰胺;尿素;亲和硅烷;剥离硅烷;无水乙醇;四甲基乙二胺(TEMED);过硫酸铵;

冰醋酸;硝酸银;甲醛溶液(37%);TaqDNA聚合酶(含Mg2+的10×PCR缓冲液);四种脱氧核糖核苷酸

(dNTPs);SSR引物;琼脂糖;GoldView染料;定性PCR试剂盒;DNA提取试剂盒;实验用水为重蒸馏

水或符合GB/T6682规定的一级水等。除特殊说明外,所用试剂均为分析纯试剂。

5.3溶液配制

相关溶液配制方法见附录A。

6方法步骤

6.1取样

检测样品的分样和保存,应符合GB/T3543.2的规定,从中随机取100粒以上种子,取其父母本材料

各10份。

6.2单粒种子的DNA提取

6.2.1样品预处理

在玻璃培养皿底部垫上一层厚度约3mm的棉花或滤纸,用水浸湿后均匀地撒上检测样品,再于表面

覆盖一层纱布,置于光照培养箱中。培养条件为16h35℃光照培养,8h28℃暗培养,待种子长出子叶

后备用。

6.2.2DNA提取

取单株幼苗子叶,放入1.5mL离心管中,在液氮中研碎,放入1.5mL离心管中。将DNA提取液预热

到65℃,每管放入400µL混合样品,将离心管置于65℃金属浴或水浴锅中,保温30min后取下,向

离心管中加入400µL24:1氯仿-异戊醇(V:V),振荡混匀。10000g离心10min。将上清液200µL转

入另一支1.5mL离心管,加入400µL-20℃预冷无水乙醇沉淀DNA。10000g离心1min,弃上清液,

加入500µL乙醇——乙酸铵溶液,6000g离心5min收集沉淀。加入100µLTE(pH8.0)溶液溶解DNA。

6.2.3DNA的浓度和质量

将DNA适当稀释或浓缩,使其OD260值在0.1~0.8的区间内,测定并记录其在260nm和280nm的吸光

度。以1个OD260值相当于50mg/LDNA浓度来计算纯化DNA的浓度,并进行DNA凝胶电泳检测DNA完整性。

DNA溶液的OD260/OD280值应在1.7~2.0之间,或质量能复合检测要求。

6.3分子标记筛选

2

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