DB37/T 3802-2019 花生品种鉴定技术规程 SSR标记法

DB37/T 3802-2019 Peanut variety identification technical specification SSR marker method

山东省地方标准 简体中文 现行 页数:17页 | 格式:PDF

基本信息

标准号
DB37/T 3802-2019
标准类型
山东省地方标准
标准状态
现行
中国标准分类号(CCS)
国际标准分类号(ICS)
发布日期
2019-12-24
实施日期
2020-01-24
发布单位/组织
山东省市场监督管理局
归口单位
-
适用范围
-

发布历史

研制信息

起草单位:
起草人:
出版信息:
页数:17页 | 字数:- | 开本: -

内容描述

ICS65.020

B04

DB37

山东省地方标准

DB37/T3802—2019

花生品种鉴定技术规程SSR标记法

Protocolforidentifyingpeanutvariety—SSRmarkermethod

2019-12-24发布2020-01-24实施

山东省市场监督管理局发布

DB37/T3802—2019

前言

本标准按照GB/T1.1—2009给出的规则起草。

本标准由山东省农业农村厅提出并组织实施。

本标准由山东省农业标准化技术委员会归口。

本标准起草单位:山东省花生研究所。

本标准主要起草人:闫彩霞、单世华、赵小波、李春娟、王娟、苑翠玲、孙全喜、宋秀霞。

I

DB37/T3802—2019

花生品种鉴定技术规程SSR标记法

1范围

本标准规定了利用简单重复序列(Simplesequencerepeat,SSR)标记法进行花生(Arachis

hypogaeaL.)品种鉴定的术语与定义、仪器设备、试剂与溶液配制、引物信息、鉴定方法、数据读取

与判定方法。

本标准适用于花生品种的鉴定。

2规范性引用文件

下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文

件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。

GB/T3543.2农作物种子检验规程扦样

GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法

GB/T19557.1植物新品种特异性、一致性和稳定性测试指南总则

NY/T2237植物新品种特异性、一致性和稳定性测试指南花生

3术语与定义

下列术语和定义适用于本文件。

3.1

简单重复序列simplesequencerepeat,SSR

由几个核苷酸(1~6个)为重复单位聚集而成的长达几十个至几百个bp(一般为100~200)的串联

重复序列,又称微卫星序列或短串联重复序列,其多态性主要来源于串联数目的不同。

3.2

推荐引物recommendedprimer

根据最少引物区分最多品种的原则筛选出的一套SSR引物,具有条带清晰、多态性高、重复性好、

均匀分布的特点,用于DNA分子数据的采集和品种鉴定。

3.3

参照品种referencevariety

具有推荐SSR位点上不同等位变异的花生品种,用于辅助确定送检样品的等位变异扩增片段的大小,

校正仪器设备的系统误差。

4仪器设备

1

DB37/T3802—2019

所用仪器设备见附录A。

5试剂、溶液配制及引物信息

5.1试剂及溶液配制

试剂及溶液配制见附录B(除特殊说明外,所用试剂均为分析纯)。

5.2引物信息

推荐引物的相关信息见附录C。

6鉴定方法

6.1样品准备

6.1.1样品为花生种子及其他植物组织。种子样品的分样和保存,按照GB/T3543.2的规定执行。

6.1.2每份样品中至少随机抽取10个个体,每个个体单独分析。如样品为种子,水培法种植,至第三

片真叶长出后备用。参照品种(见附录D)各种植2粒,混合分析。

6.2样品的DNA提取

6.2.1DNA提取

取花生幼嫩组织50mg,放入组织破碎仪中,液氮研磨。十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)法提取基

因组DNA,室温风干,加入100μL1×TE(pH8.0)溶液溶解DNA。完全溶解后每管加入5μLRNAase,

37℃温育1h,-20℃下保存留用。

6.2.2DNA浓度和质量检测

利用0.8%琼脂糖凝胶电泳检测DNA完整性,GoldView染料进行染色。测定DNA溶液的OD260/OD280值,

在1.8~2.0范围内最佳。测定其OD260的吸光度,以1个OD260值相当于50mg/LDNA浓度来计算DNA的浓度。

稀释至工作浓度为30ng/μL,置于4℃下备用。

6.3PCR扩增

6.3.1参照品种的使用

在进行PCR扩增和等位基因检测时,不同SSR引物的参照品种参见附录C。

6.3.2反应体系

总体系为10μL,包括4.5ng/μLDNA,0.8μmol/LF/R引物,1×DreamTaqGreenPCRMaster

Mix,1.9μL蒸馏水,混匀。

6.3.3反应程序

95℃预变性3min;95℃变性45s,55℃退火45s,72℃延伸45s,进行35个循环;72℃延伸

5min;4℃下保存备用。

6.4PCR产物检测

2

DB37/T3802—2019

6.4.1玻璃板组装

清洗玻璃板和样品梳,晾干。用无水乙醇擦拭凹板和平板各2遍,待玻璃板彻底干燥后,将1.0mm

厚的塑料边条整齐摆放在平板两侧,盖上凹板,对齐,夹紧,用水平仪调平。

6.4.2制胶

根据凝胶的面积和数量,调整6%聚丙烯酰胺凝胶溶液的用量,分别加入1‰的APS和1‰的TEMED,

轻轻摇匀,防止产生气泡,迅速灌胶。待胶液充满玻璃板夹层,在上部凹面处轻轻插入样品梳平端,深

度约0.8cm。室温下静置1h,使胶液聚合,如室温较低可适当延长聚合时间。

6.4.3电泳准备

将制好的胶板固定于垂直电泳槽上,凹板向内。上下槽中各加入1×TBE缓冲液,至下槽液面约为槽

高的1/3,上槽液面高于玻璃板凹面约1cm。拔去梳子,冲洗胶孔,清除底层气泡和杂质。将样品梳齿

端插入凝胶1mm~2mm处。

6.4.4上样

PCR产物中加入1/6体积的6×loadingbuffer,微量移液器上样,每孔加入2μLPCR扩增产物(上

样量可根据加样孔的大小适当调整)。20bpDNALadder分子量标记加入两侧加样孔中,对应参照品种

的PCR产物加入中间加样孔中,检测样品PCR产物加入其余加样孔中。

6.4.5电泳

电压为200V,根据指示剂位置调整时间,至青蓝色的二甲苯青指示带到达胶板底部,停止电泳,

电泳时间一般为2h。

6.5银染显色

6.5.1水洗

电泳结束后,分开两块玻璃板,取出凝胶,用蒸馏水快速漂洗2次,不超过10s。

6.5.2银染

将凝胶转移至适量染色液中,使其完全浸没,在摇床上轻摇10min。

6.5.3水洗

将凝胶从染色液中取出,在蒸馏水中快速漂洗2次,时长8s~10s。

6.5.4显影

将凝胶转移至适量显色液中,使其完全浸没,在摇床上轻摇至带纹清晰。

6.5.5漂洗

将凝胶转移到蒸馏水中清洗,直至蒸馏水澄清。

6.6成像

将凝胶置于凝胶成像系统的工作台上,选用透射紫外光观察,调节至图像最清晰,保存。

3

DB37/T3802—2019

7数据读取与判定方法

7.1数据读取

利用凝胶分析软件Quantityone读取条带,每个SSR位点的等位变异大小用扩增片段长度表示,单

位为bp。与对应的参照品种进行比较,校正系统误差,确定送检样品在每个位点的等位变异大小,获得

送检样品27个SSR位点的指纹图谱。

7.2判定方法

根据送检样品与相应品种指纹图谱的差异位点数,对送检样品进行鉴定。

——当送检样品与相应品种指纹图谱的差异位点数≥2,则判定为“不同品种”;

——当差异位点数=1,判定为“近似品种”;

——当差异位点数=0,判定为“疑同品种”。

对于差异位点数≤1个的送检样品,应按GB/T19557.1给出的原则和NY/T2237给出的方法进行田间

测试,确定送检样品在表型性状上是否与对应品种一致。

4

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AA

附录A

(规范性附录)

仪器设备

A.1组织破碎仪

温控范围为-40℃~室温。

A.2高压灭菌锅

灭菌温度为105℃~136℃,最大工作压力为0.22MPa。

A.3凝胶成像系统

分辨率不低于400百万像素。

A.4高速冷冻离心机

最大离心力不小于15000g。

A.5PCR扩增仪

控温范围为0℃~100℃。

A.6紫外可见分光光度计

波长范围为190nm~1100nm。

A.7恒温水浴锅

温度范围为室温~99℃。

A.8水平摇床

转速为0rpm~230rpm。

A.9微波炉

最高耐温120℃。

A.10电子天平

5

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精确到0.01g。

A.11电泳槽

样品通量为1.0mm厚。

A.12磁力搅拌器

转速为0r/min~2500r/min,控温范围为室温~100℃。

A.13酸度计

测量范围为0.00pH~14.00pH。

A.14微量移液器

量程分别为2µL、10µL、100µL、200µL、500µL和1000µL。

6

DB37/T3802—2019

BB

附录B

(规范性附录)

试剂及溶液配制

B.1试剂

B.1.1乙二胺四乙酸钠(EDTA-Na2)。

B.1.2三羟基甲基氨基甲烷(Tris)。

B.1.3盐酸(HCl,36%)。

B.1.4十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)。

B.1.5氯化钠(NaCl)。

B.1.6硼酸(Borate)。

B.1.7丙烯酰胺。

B.1.8甲叉双丙烯酰胺。

B.1.9四甲基乙二胺(TEMED)。

B.1.10无水乙醇。

B.1.11过硫酸铵(APS)。

B.1.12硝酸银(AgNO3)。

B.1.13琼脂糖。

B.1.146×loadingbuffer。

B.1.15GoldView染料。

B.1.16RNAase(10mg/mL)。

B.1.17酚:氯仿:异戊醇(体积比25:24:1)。

B.1.18异丙醇。

B.1.19四硼酸钠。

B.1.20甲醛。

B.1.212×DreamTaqGreenPCRMasterMix。

B.1.22SSR引物(10μmol/L)。

B.1.2320bpDNALadder。

B.1.24重蒸水或符合GB/T6682规定的一级水.

B.2溶液配制

B.2.11mol/LNaOH

4gNaOH,加蒸馏水定容至100mL。

B.2.21mol/LTris-Cl(pH8.0)溶液

称取121.1gTris,加蒸馏水定容至1L,浓盐酸调至pH8.0,高压灭菌备用。

B.2.30.5mol/LEDTA(pH8.0)溶液

7

DB37/T3802—2019

称取186.1gEDTA-Na2,800mL蒸馏水,加热定容至1L,1mol/LNaOH调至pH8.0,高压灭菌备用。

B.2.41×TE

1mL1mol/LTris-HCl(pH8.0),0.2mL0.5mol/LEDTA(pH8.0),加蒸馏水定容至100mL。

B.2.5DNA提取液

4gCTAB,16.364gNaCl,20mL1mol/LTris-Cl(pH8.0),8mL0.5mol/LEDTA(pH8.0),

加蒸馏水定容至200mL,4℃条件下保存。使用前加入2%的巯基乙醇,实验前预热至65℃。

B.2.670%乙醇

700mL无水乙醇,加蒸馏水定容至1L。

B.2.710×TBE缓冲液

分别称取108g三羟基氨基甲烷,55g硼酸,加入800mL蒸馏水加热溶解,再加入0.5mol/LEDTA

(pH8.0)溶液37mL,加蒸馏水定容至1L。

B.2.81×TBE缓冲液

100mL10×TBE,加蒸馏水定容至1L。

B.2.910%APS

0.5gAPS溶于5mL蒸馏水中。

B.2.106%聚丙烯酰胺凝胶溶液(29:1)

分别称取58g丙烯酰胺,2g甲叉双丙烯酰胺,100mL10×TBE,加蒸馏水定容至1L,4℃条件下

保存。

B.2.11染色液

称取1g硝酸银,加蒸馏水定容至1L。

B.2.12显色液

6gNaOH,0.2g四硼酸钠,1.6mL甲醛,加蒸馏水定容至400mL。

8

DB37/T3802—2019

CC

附录C

(资料性附录)

推荐引物

推荐引物见表C.1。

表C.1推荐引物

引物连锁群引物序列(5′→3′)常见等位变异(bp)参照品种

160zh.h2461

162zh.h5075

164zh.h2406

166zh.h1961

F-tcggtttgggagacactctt

Ah1TC5A06A07168zh.h0949

R-ttgtaagcagacgccacatc

172zh.h2250

176zh.h2405

180zh.h2764

188zh.h0537

168zh.h2413

174zh.h2499

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