DB15/T 1476-2018 液相色谱-串联质谱法 测定土壤及马铃薯中9种种衣剂的残留量
DB15/T 1476-2018 Liquid chromatography-tandem mass spectrometry method for determining the residues of nine seed coating agents in soil and potatoes
基本信息
发布历史
-
2018年08月
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研制信息
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- 页数:13页 | 字数:- | 开本: -
内容描述
ICS65.020.01
B10
备案号:59985-2018DB15
内蒙古自治区地方标准
DB15/T1476—2018
液相色谱-串联质谱法
测定土壤及马铃薯中9种种衣剂的残留量
Detectionof9seed-coatingagentsresiduesfromseedcoatingreagentinsoiland
potatobyLC-MS-MS
2018-08-15发布2018-11-15实施
内蒙古自治区质量技术监督局发布
DB15/T1476—2018
前言
本标准按照GB/T1.1-2009给出的规则起草。
本标准由内蒙古自治区农牧业科学院提出。
本标准由内蒙古自治区农业标准化技术委员会(SAM/TC20)归口。
本标准起草单位:内蒙古自治区农牧业科学院。
本标准起草人:张福金、张欣昕、姚一萍、李国银、王雪娇、尹鑫、李秀萍、崔艳、骆洪。
I
DB15/T1476—2018
液相色谱-串联质谱法
测定土壤及马铃薯中9种种衣剂的残留量
1范围
本标准规定了土壤和马铃薯中噻虫嗪、多菌灵、克百威、灭多威、吡虫啉、嘧菌酯、戊唑醇、甲霜
灵和甲基托布津残留量的液相色谱-串联质谱的测定方法。
本标准适用于土壤中和马铃薯中噻虫嗪、多菌灵、克百威、灭多威、吡虫啉、嘧菌酯、戊唑醇、甲
霜灵和甲基托布津残留量的测定。
2规范性引用文件
下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文
件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。
GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法
GB/T8855新鲜水果和蔬菜的取样法
NY/T52土壤水分测定法
NY/T1121.1土壤检测第1部分:土壤样品的采集、处理和贮存
3原理
试样中种衣剂残留物经乙腈提取,用键合硅胶吸附剂固相分散剂净化后,用液相色谱-串联质谱进
行测定,外标法定量。
4试剂和材料
4.1除另有规定外,本方法所用试剂均为分析纯,水为GB/T6682规定的一级水。
4.2乙腈:色谱纯
4.3甲酸:色谱纯
4.4氯化钠:分析纯
4.5无水硫酸镁:分析级,研磨后在500℃马弗炉内烘干,置于干燥器中保存。
4.60.1%甲酸溶液(体积分数):取0.1mL甲酸加水稀释至100mL。
4.70.1%甲酸水-甲醇溶液(90+10,体积比)。
4.8标准品
1
DB15/T1476—2018
噻虫嗪、多菌灵、克百威、3-羟基克百威、灭多威、吡虫啉、嘧菌酯、戊唑醇、甲霜灵和甲基托不
津标准品:纯度大于98%
4.9标准溶液
4.9.1标准储备液
准确称取适量的噻虫嗪、多菌灵、克百威、3-羟基克百威灭多威、吡虫啉、嘧菌酯、戊唑醇、甲霜
灵和甲基托布津标准品,用甲醇分别配制成100mg/L的标准储备液,保存于-18℃冰箱内,可使用6个
月。
4.9.2混合标准储备液
分别准确吸取1.00mL噻虫嗪、多菌灵、克百威、3-羟基克百威、灭多威、吡虫啉、嘧菌酯、戊唑
醇、甲霜灵和甲基托布津标准储备液至10mL容量瓶内,用甲醇稀释定容至刻度,配制成10mg/L的混
合标准储备液,于-18℃冰箱内避光保存,可使用3个月。
4.9.3基质混合标准工作液
根据需要,用阴性样品基质系列稀释混合标准工作液,使用前临时配制。
4.10键合硅固相萃取吸附剂:C18,15mm;PSA,0.15mm。
4.11微孔过滤膜(尼龙):13mm×0.2µm。
5仪器和设备
5.1高效液相色谱-串联质谱联用仪:配有电喷雾离子源(ESI)。
5.2分析天平:感量0.01mg和0.01g。
5.3离心机:转数6000r/min以上。
5.4涡旋混合器。
6试样制备和保存
按照NY/T1121.1中有关规定采集土壤,去杂质后充分混匀,保存在-18℃冷冻冰箱中。按照NY/T
52标准要求,取新鲜土壤,105±2℃烘干冷却称重,测定土壤的水分含量(a),在计算时土壤换算至
烘干的水分换算系数F(F=1-a)。
按照GB/T8855标准要求,取样的马铃薯样品切碎、混匀、匀浆、密封,作为试样。将试样保存在
-18℃冷冻冰箱中。
7测定步骤
7.1提取
7.1.1马铃薯样品
2
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称取10g试样(精确到0.01g)于50mL离心管中,加入10.0mL乙腈(4.1),涡旋振荡0.5min,超
声提取10min,再加入1g氯化钠(4.3),4g无水硫酸镁(4.4),涡旋混合1min后,以6000r/min
的转速离心5min,取上层有机相净化。
7.1.2土壤样品
称取10g新鲜试样(精确到0.01g)于50mL离心管中,加入10.0mL乙腈(4.1)和5mL水,涡旋振
荡0.5min,超声提取10min,再加入1g氯化钠(4.3),4g无水硫酸镁(4.4),涡旋混合1min后,
以6000r/min的转速离心5min,取上层有机相净化。
7.2净化
7.2.1马铃薯样品
移取提取液2.00mL于5mL离心管中,加入150mg无水硫酸镁(4.4),50mgC18(4.9),涡旋
混合1min后,以6000r/min的转速离心1min。取上清液,用0.1%的甲酸水-甲醇溶液(4.6)稀释定
容至5.0mL,过0.2µm微孔过滤膜,待测。
7.2.2土壤样品
移取提取液2.00mL于5mL离心管中,加入150mg无水硫酸镁(4.4),25mgC18(4.9),25mg
PSA(4.9)。涡旋混合1min后,以6000r/min的转速离心1min。取上清液,用0.1%的甲酸水-甲醇溶
液(4.6)稀释定容至5.0mL,过0.2µm微孔过滤膜,待测。
7.3阴性样品提取液的制备
取不含待测物的阴性马铃薯和土壤样品,按7.1和7.2步骤制备阴性样品提取液,用于配制基质混合
标准工作液。
7.4测定
7.4.1液相色谱-质谱法测定条件
具体如下:
a)色谱柱:C18,100mm×2.1mm(内径),粒径,1.7µm;
b)流动相:A:0.1%甲酸溶液(4.5),B:乙腈(4.1),梯度洗脱见表1;
表1梯度洗脱表
时间/min流速/(mL/min)A/%B/%
0.000.359010
2.000.357030
3.000.351090
5.500.351090
6.500.359010
c)柱温:40℃;
d)进样量:1µL;
e)离子源:电喷雾(ESI);
f)扫描方式:正离子扫描模式;
3
DB15/T1476—2018
g)检测方式:多反应监测(MRM);
h)电离电压:2500V;
i)离子源温度:120℃;
j)雾化温度:450℃;
k)锥孔气流速:50L/h;
l)雾化气流速:650L/h;
m)待测物保留时间、定性定量离子对及锥孔电压、碰撞能量见表2。
表29种种衣剂保留时间、定性定量离子对及锥孔电压、碰撞能量
保留时间定性离子对定量离子对锥孔电压
待测物名称碰撞电压V
min
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