适用范围：主要技术内容:单极低温等离子系统的结构、技术要求、试验方法、标志、使用说明书、包装、运输和贮存

适用范围：范围:本标准样品主要用于临床检验及相关领域对同型半胱氨酸项目测量的质量控制、检测系统性能评价、实验室能力验证、相关材料的量值传递等方面; 主要技术内容:本标准样品以混合人血清样本为原料，经过传染病筛查、混匀、过滤后分装于冻存管中，每支不少于0.5 mL

适用范围：范围:本文件规定了5G智慧应用腹腔镜手术机器人的缩略语、技术要求、5G网络要求、试验方法和标志、包装、运输与贮存。 本文件适用于采用5G通讯技术的腹腔镜辅助手术机器人系统; 主要技术内容:本文件规定了5G智慧应用腹腔镜手术机器人的缩略语、技术要求、5G网络要求、试验方法和标志、包装、运输与贮存。本文件适用于采用5G通讯技术的腹腔镜辅助手术机器人系统

适用范围：主要技术内容:本文件规定了老年体表慢性难愈合创面局部护理的基本要求、评估、创面局部护理和监测。本文件适用于老年体表慢性难愈合创面局部护理

适用范围：范围:本文件规定了前列腺特异性抗原（PSA）检测的通用技术，血液、前列腺液采集及PSA检测和临床应用; 主要技术内容:本文件采用的整体结构为：1、范围；2、规范性引用文件；3、术语和定义；4、PSA检测通用技术；5、血液、前列腺液采集及PSA检测；6、PSA检测的临床应用。本文件适用于男性前列腺健康相关的科学研究，以及男性前列腺相关疾病的筛查、辅助诊断、治疗及预后等情况需要开展的PSA检测

适用范围：主要技术内容:中医理论的文献检索步骤与报告规范，以及证据评价要素

适用范围：范围:本文件规定了创面修复材料体外评价的样品制备、血管形成试验和结果分析。 本文件适用于适用于创面修复材料促进创面微血管形成效果的评价; 主要技术内容:5血管形成试验5.1原理人的血管系统负责将营养物质和氧气运送到几乎所有的器官和组织，并将产生的废物通过循环排除体外。血管生成在组织损伤修复中具有很大的作用，血管的缺损会延缓伤口的愈合甚至造成伤口长期不愈。血管新生有利于黏膜损伤后的修复，因此通过EA.HY926细胞探究水凝胶浸提液对于血管形成的影响。器具、试剂和耗材、细胞系5.2.1器具试验器具如下：a)二氧化碳细胞培养箱；b)恒温水浴摇床；c)高压蒸汽灭菌锅；d)倒置荧光显微镜；e)细胞计数仪；f)恒温水浴摇床；g)酶标仪；h)电子天平；i)液氮罐；j)冷冻离心机；k)T25细胞培养瓶；l)24孔板；m)基质胶；n)Image J图像处理软件。5.2.2试剂和耗材试验试剂和耗材如下a)MEM低糖培养基：含10％胎牛血清；b)磷酸缓冲液（PBS）；c)0.25％胰蛋白酶。5.2.3细胞系EA.HY926细胞。5.3样品制备5.3.1试验样品按照4.1、4.2制备。5.3.2空白对照MEM低糖培养基，37?℃、120?r/min摇床中震荡24?h。5.4试验步骤5.4.1EA.HY926细胞培养5.4.1.1细胞复苏将EA.HY926细胞冻存管于37?℃恒温水浴锅内不断晃动，待细胞冻存液完全溶解，将冻存的细胞悬液转移至15?mL离心管内，随后加入MEM低糖培养基，用无菌巴氏吸管吹打均匀后1?000?r/min离心3?min。弃去上清液，用MEM低糖培养基重悬细胞，随后将细胞转移至T25的培养瓶中，在37?℃、5％CO2细胞培养箱中培养，24?h后观察细胞状态，并给细胞换液。5.4.1.2细胞传代当细胞密度约为80％时，吸去培养瓶中原有的培养基，使用PBS轻洗两次，加入1?mL～2?mL?0.25％胰蛋白酶消化3?min～5?min，显微镜观察细胞消化情况，当细胞边缘缩小，贴壁松动时，手指轻叩细胞瓶身，肉眼可见细胞脱落，向培养瓶内加入一定量的MEM低糖培养基终止消化，MEM低糖培养基与0.25％胰蛋白酶的比例为5：1。终止消化后，用移液枪轻轻吹打细胞层，吹打时宜尽量减少气泡的产生，将细胞层吹落、吹散，然后将细胞悬液转移至离心管内，1?000?r/min离心

适用范围：主要技术内容:本文件描述了鸡传染性支气管炎病毒QX型荧光RT-PCR检测方法。本文件适用于鸡咽喉拭子及气管、肺脏、肾脏、输卵管等组织中鸡传染性支气管炎病毒QX型的核酸检测

适用范围：范围:本文件规定了耳鸣临床诊疗实践的条件、流程、内容和要求、随访和疗效评估的要求。 本文件适用于参与耳鸣临床诊疗的临床医生、听力师、心理健康专家等各类医疗服务者; 主要技术内容:耳鸣程度分级评估量表、耳鸣影响因素评估量表

适用范围：范围:本文件规定了磷酸钙生物陶瓷的体内骨诱导性评价的动物模型、植入试验、结果判定和报告内容。 本文件适用于磷酸钙生物陶瓷的体内骨诱导性能评价; 主要技术内容:5 植入试验5.1 实验动物管理按照GB/T 16886.2的要求进行。5.2 样品准备植入物的体积/质量应一致，植入的样品应无菌。注：对于粒径小于1 mm颗粒样品，若颗粒由块状破碎制成，可采用破碎之前的块状样品进行试验。5.3 植入操作按照GB/T 16886.6的要求进行。5.4 术后管理5.4.1 术后每天观察一次动物的健康状况并记录，可通过直接接触动物或笼外观察的方式判定动物健康状况。若观察到有异常的临床症状或炎症及感染症状，应尽快进行相应处理与记录。5.4.2 若实验动物在试验过程中发生死亡，应记录动物的最终体重，并对动物进行尸检，将植入部位及周围组织取出并固定，直至确定其在组织学研究中的潜在用途。5.5 取材方法5.5.1 在设计的时间点进行取材，取材前记录每只动物的最终体重、健康状况，以及是否存在异常等状况。5.5.2 相关操作及动物福利要求按照 GB/T 16886.2 和 GB/T 16886.6 的要求进行。5.6 组织学评价5.6.1 取材后，采用经确认的方法进行固定，将固定好的样本进行硬组织切片；或通过常规组织学处理程序，进行脱钙、脱水、石蜡或其他介质包埋并修整，然后选择新骨形成观察方法对切片进行染色。建议的染色方法有：苏木素-伊红染色（H&E），甲苯胺蓝染色、阿辛蓝染色、Masson 三色染色、亚甲基蓝-碱性品红染色、Goldner 三色染色和 Von Kossa 染色等。若使用 Von Kossa 染色，应注意区分污点和新生骨的钙化。5.6.2 每个样本至少制备 3 张切片，选取染色最均匀、植入材料量最多的切片用于成骨诱导能力评价。5.6.3 使用显微镜观察或切片扫描系统确定样品内部是否存在新骨形成物及其量。组织学切片中新骨的识别见附录 A。5.6.4 对观察结果进行评分，统计一个切片所有视野中新骨形成的面积（A）和样品内部所有孔隙结构的面积（B），按照式（1）计算新骨形成量（P）。注：新骨形成包括：骨质、新骨、编织骨、板层骨和骨髓。? =?/?× 100％ ······························································